• 183.50 KB
  • 2022-06-16 12:37:20 发布

分离自蜂蜜中的嗜渗酵母的实时荧光pcr法快速鉴定

  • 8页
  • 当前文档由用户上传发布,收益归属用户
  1. 1、本文档共5页,可阅读全部内容。
  2. 2、本文档内容版权归属内容提供方,所产生的收益全部归内容提供方所有。如果您对本文有版权争议,可选择认领,认领后既往收益都归您。
  3. 3、本文档由用户上传,本站不保证质量和数量令人满意,可能有诸多瑕疵,付费之前,请仔细先通过免费阅读内容等途径辨别内容交易风险。如存在严重挂羊头卖狗肉之情形,可联系本站下载客服投诉处理。
  4. 文档侵权举报电话:19940600175。
分离自蜂蜜中的嗜渗酵母的实时荧光PCR法快速鉴定陈世琼1蔡雪凤1逄波2韩玥3伊鋆1任岩1(1北京市海淀区产品质量监督检验所北京100094;2中国疾病预防控制中心北京102206;3北京市出入将检验检疫局北京100026)摘要:嗜渗酵母是导致蜂蜜腐败的主要微生物。鲁氏接合酵母是嗜渗酵母中最常见的种类。酵母的传统生化鉴定方法繁琐、耗时。为快速鉴定分离自蜂蜜的嗜渗酵母的种类,本研究建立了针对鲁氏接合酵母的实时荧光PCR快速鉴定方法。并用此方法对分离自蜂蜜的62株嗜渗酵母进行了快速鉴定,发现其中21株为鲁氏接合酵母。实时荧光PCR方法鉴定鲁氏接合酵母,全过程仅需约5小时,与常用的生化鉴定方法相比,简化了鉴定步骤,提高了鉴定准确性,缩短了鉴定时间。关键词:蜂蜜嗜渗酵母实时荧光PCR鉴定Rapididentificationofeosinophilsyeastisolatedfromhoneybyreal-timePCRmethodShiqiongChen1*XuefengCai1*BoPang2YueHan3JunYi1(1BeijingHaidianDistrictProductsQualitySupervisionandInspectionInstitute,Beijing,100094;2ChineseCenterforDiseaseControlandprevention,Beijing,102206;3BeijingEntry-exitInspectionandQuarantineBureau,Beijing,100026)Abstract:Osmophilicyeastisthemainmicroorganismwhichleadhoneytocorruption.Zygosaccharomycesrouxii(Z.rouxii)wasthemostcommontypeofosmophilicyeast.Thisstudyestablishedareal-timePCRforrapididentificationofZ.rouxii.SixtytwostrainsofosmophilicyeastisolatedfromhoneywererapidlyidentifiedbythisrealtimePCRmethod.Theresultsshowedthat21ofthemwereZ.rouxii.ToidentifiyZ.rouxiibyreal-timePCRmethod,thewholeprocessonlyneedsabout5hours.Comparedwiththecommonlyusedbiochemicalidentificationmethods,therealtimePCRmethodismoresimple,accurateandtimesaving.Keywords:honey;Osmophilicyeast;RealTimePCR;identification【中图分类号】TS255.1【文献识别码】A【文章编号】蜂蜜较其他食品而言,具有高糖、高渗透压等性质,因此具有一定的抑制微生物生长的作用,所以蜂蜜中所具有的微生物种类与数量是相对较少的[1,2] 。但是,酵母、霉菌,以及一些能够形成芽孢的细菌,能够在高糖、低水分活度的环境中生存,它们也经常给蜂蜜产业带来问题[3,4]。酵母能够影响蜂蜜产品的货架期和质量的稳定性[5]。蜂蜜中出现的酵母主要有两类:一类为嗜渗酵母(osmophilicyeast),另一类为耐高糖酵母(sugar-tolerantyeasts),其中嗜渗酵母对蜂蜜品质影响较大[4,6,7]。嗜渗酵母中,已有的研究报道表明,有结合酵母(Zygosacchuromyces)、酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、针孢酵母(Nematospora)和圆酵母(Torula)被从蜂蜜或其它高糖食品中分离出来[4,8-10]。鲁氏接合酵母是常见的嗜渗酵母,能引起蜂蜜及其加工产品变质。因此,2011,中华人民共和国卫生部发布并实施了《食品安全国家标准—蜂蜜》(GB14963-2011),代替了《蜂蜜卫生标准》(GB14963-2003)以及《蜂蜜》(GB18796-2005)标准[11]。新标准除了对蜂蜜的定义、蜜源要求等进行了增订、修改外,还增加了对嗜渗酵母的计数要求[12]。传统酵母菌鉴定,包括蜂蜜中的鲁氏酵母的鉴定,一般采用传统生化鉴定方法。此方法耗费时间长,且操作步骤繁琐[13,14],一般需要1-2周才能完成[14]。分子生物学技术的发展,为分离自蜂蜜的接合酵母的快速鉴定提供了新的替代方法[15]。实时荧光PCR技术具有快速、灵敏、特异性强等优点,是一种极具优势的分子生物学技术[16]。本研究的目的是建立针对鲁氏接合酵母的实时荧光PCR快速鉴定方法,并对分离自蜂蜜的嗜渗酵母进行快速鉴定,以便为蜂蜜产品中嗜渗酵母的溯源,以及蜂蜜产品的质量控制提供技术支持。1材料与方法1.1菌株本研究使用的菌株见表1: 表1本研究使用的菌株Table1Microbialstrainsusedintheresearch编号菌名菌号123456789101112131415-77鲁氏接合酵母ZygosaccharomycesrouxiiZygosaccharomycesrouxiiZygosaccharomycesrouxii酿酒酵母Saccharomycescerevisiae粘红酵母Rhodotorulaglutinis粉状毕赤酵母Pichiacarsonii近平滑假丝酵母Candidaparasilosis汉逊德巴利酵母Zygosaccharomycesbisporus布鲁塞尔德克酵母Dekkerabruxellensis斯巴达毕赤酵母Pichiaspartinae黑曲霉Aspergillusniger大肠杆菌E.coli金黄色葡萄球菌Staphylococcusaureus脂环酸芽孢杆菌Alicyclobacillus未知酵母CGMCC2.1915CICC1417CICC31259CGMCC2.1882CGMCC2.0703CGMCC2.1908CGMCC2.1846CGMCC2.1595JCM11407JCM10741ATCC16404ATCC259225-3,分离自样品DSMZ3922分离自蜂蜜产品其中,编号为1、2和3为鲁氏接合酵母标准菌株;4-14为参比菌株,其中,4-10为其他食品中常见的其他腐败酵母,11为黑曲霉(ATCC16404),12-14为细菌。15-77为分离自蜂蜜样品的未知酵母。1.2仪器及试剂实时荧光PCR仪(ABI7300);生化培养箱。反应预混液(2╳TaqManUniversalMasterMix,ABI)(Cat.No.:4427788);酵母基因组提取试剂盒(天根生化科技有限公司,以下简称天根公司)(Cat.No.:DP307-02)。1.3试验方法1.3.1菌株的培养及DNA提取将表1中的菌株用马铃薯-葡萄糖培养基培养基[16]28℃培养24h,取培养液用天根公司酵母基因组提取试剂盒提取DNA。详细操作过程见试剂盒说明书。提取的DNA于-20℃ 冰箱贮存备用。1.3.2鲁氏接合酵母实时荧光PCR鉴定方法的建立根据本实验设计的探针引物序列,从上海英骏生物技术有限公司合成引物探针。分别以表1中1-10目的菌株及参比菌株的DNA为模板,配置20μL实时荧光PCR反应体系,组成如下:含10μL2╳TaqManUniversalMasterMix,上下游引物(10μmol/L)各1μL,探针(10μmol/L)1μL,模板50ng-100ng,用灭过菌的双蒸水补足20μL。在ABI7300扩增,扩增条件为:95℃,10min;95℃,15s;60℃,1min;40个循环。根据Ct值判断探针、引物的特异性。2结果与分析2.1引物、探针的特异性试验结果引物、探针的有效性、特异性试验结果详见图1及表2:从图1及表2可以看出,本研究使用的针对Zygosaccharomycesrouxii实时荧光PCR探针和引物对Z.rouxii属目的菌株有高度的特异性。在本研究所使用的扩增条件下,目的菌株CGMCC2.1915、CICC1417和CICC31259的的扩增曲线的Ct值分别为19.28、22.01和22.71,其他酵母、曲霉、细菌标准菌株或参比菌株扩增曲线的Ct值均显示为未扩出。空白对照BLANK未扩出,说明实验结果有效,不存在污染。 图1引物、探针的有效性实验Fig.1TheprobeandprimersofZ.rouxiiofrealtimePCR注:图1中,曲线1、2以及3分别表示以Z.rouxii标准菌株CGMCC2.1915、CICC1417和CICC31259的基因组DNA为模板时的扩增曲线;4-15表示以表2中其他参比菌株的基因组DNA或者DNAFREEWATER(见表2中的BLANK)作为模板的扩增曲线(曲线编号与表2中编号一一对应)。表2引物、探针的特异性试验结果编号标准或参比菌株名称及菌号扩增结果(Ct值)1ZygosaccharomycesrouxiiCGMCC2.19152ZygosaccharomycesrouxiiCICC14173ZygosaccharomycesrouxiiCICC312594SaccharomycescerevisiaeCGMCC2.18825RhodotorulaglutinisCGMCC2.07036PichiacarsoniiCGMCC2.19087CandidaparasilosisCGMCC2.18468ZygosaccharomycesbisporusCGMCC2.15959DekkerabruxellensisJCM1140710PichiaspartinaeJCM1074111AspergillusnigerATCC1640412E.coliATCC2592213Staphylococcusaureus5-3,分离自样品14AlicyclobacillusDSMZ392215BLANK**19.2822.0122.71N*NNNNNNNNNNN 注:*表中“N”表示“UNDETECT”;**表示以DNAFREEWATER为模板,即空白对照。2.2分离自蜂蜜样品的未知酵母实时荧光PCR方法快速鉴定结果使用针对Z.rouxii实时荧光PCR方法鉴定用的探针和引物,以分离自蜂蜜样品的62株未知酵母的DNA为模板,使用ABI公司生产的反应预混液(2╳TaqManUniversalMasterMix,ABI)(Cat.No.:4427788)配置20μl反应体系,使用1.3.2中的扩增条件,对分离自食品样品的62株未知酵母进行快速鉴定。鉴定结果发现,所有被鉴定的60株嗜渗酵母中,有21株Ct值与阳性对照鲁氏接合酵母标准菌株相近,判断其为鲁氏接合酵母;其他41株为与鲁氏接合酵母不同的酵母。进一步鉴定将继续进行。鉴定结果见图2。图2分离自蜂蜜中的嗜渗酵母实时荧光PCR快速鉴定Fig.1DetectionofOsmophilicyeastisolatedfromhoneybyrealtimePCRmethod注:图2中,曲线1为以Z.rouxii标准菌株CGMCC2.1915的DNA为模板的扩增曲线;2-22为本实验室分离自食品中的嗜渗酵母中的Z.rouxii 属的阳性菌株的扩增曲线;23-63:为本实验室分离自食品中的嗜渗酵母中的非Z.rouxii属的菌株的扩增曲线;64为空白对照的扩增曲线。3.讨论本研究建立了蜂蜜中鲁氏接合酵母的实时荧光PCR快速鉴定方法,全过程仅需要5小时时间。此方法与传统生化鉴定方法(一般需要1-2周)相比,大大节约了鉴定周期,提高了工作效率。为蜂蜜中鲁氏接合酵母的快速、准确鉴定及溯源,以及蜂蜜及其制品的质量控制检测,提供了技术手段。并且用所建立的方法从本所微生物室分离自食品的62株嗜渗酵母中,鉴定出21株Z.rouxii属的酵母。本方法及所分出的嗜渗酵母的相关研究,将继续进行。参考文献[1]AllenKL,MolanPC,ReidGM.AsurveyoftheantibacterialactivityofsomeNewZealandhoneys[J].JPharmPharmacol1991,43(12):817-822[2]AnthimidouE,MossialosD.AntibacterialactivityofGreekandCypriothoneysagainstStaphylococcusaureusandPseudomonasaeruginosaincomparisontomanukahoney[J].JMedFood2013,16(1):42-47[3]OlaitanPB,AdelekeOE,OlaIO.Honey:areservoirformicroorganismsandaninhibitoryagentformicrobes[J].AfrHealthSci2007,7(3):159-165.[4]SnowdonJA,CliverDO.Microorganismsinhoney[J].IntJFoodMicrobiol1996,31(1-3):1-26[5]OlivieriC,MarotaI,RolloF,etal.Trackingplant,fungal,andbacterialDNAinhoneyspecimens[J].JForensicSci2012,57(1):222-227[6]ParkYK,KooMH,OliveiraIM.Biochemicalcharacteristicsofosmophilicyeastsisolatedfrompollensandhoney[J].BiosciBiotechnolBiochem1996, 60(11):1872-1873[7]王凯,胡福良.蜂蜜中嗜渗酵母的来源及其与蜂蜜品质的关系[J].蜂蜜杂志,2012,11:9-10[8]SaksinchaiS,SuzukiM,LumyongS,etal.TwonewspeciesofthegenusCandidaintheZygoascusclade,Candidalundianasp.nov.andCandidasuthepensissp.nov.,isolatedfromrawhoneyinThailand[J].AntonieVanLeeuwenhoek2012,101(3):633-640[9]SCHNEIDERAHH,HAMMESWP.Theoccurrenceofosmophilicyeastsinhoney[J].DtschLebensm-Rundsch2003,99(8):310-319[10]KohTY.TheisolationofobligateosmophilicmutantsoftheyeastSaccharomycesrouxii[J].JGenMicrobiol1975,88(1):184-188[11]张敬惠.对新的食品安全国家标准-蜂蜜GB14963-2011的解读[J].蜜蜂杂志,2012(3):36[12]中华人民共和国卫生部.GB14963-2011[S].食品安全国家标准-蜂蜜.2011[13]RamonD.Trendsinwinemicrobiology[J].Microbiologia1997,13(4):405-411[14]BoekhoutT,V.Robert.Yeastsinfood:beneficialanddetrimentalaspects[M].NewYork,N.Y.;2003[15]HarrisonE,MuirA,StratfordM,WhealsA.Species-specificPCRprimersfortherapididentificationofyeastsofthegenusZygosaccharomyces[J].FEMSYeastRes2011,11(4):356-365[16]陈世琼.实时荧光PCR快速检测果汁中酿酒酵母的初步研究.食品工业科技[J].2013,34(7):319-321,349